寡营养培养基与胰酪大豆胨琼脂或肉汤在不同储存温度和培养条件下回收洋葱伯克霍尔德氏菌的比较

2024-05-18 15:05:17

洋葱伯克霍尔德氏菌复合体(BCC)能够在低营养环境和恶劣条件下保持存活,对非无菌药品构成污染风险,且难以检测。BCC分离株是污染无菌和非无菌药品的一些最常见的微生物,最近爆发的几次感染与被发现的含有BCC的防腐剂有关。含水产品尤其危险,因为BCC能够在恶劣条件下保持活力,包括防腐剂的存在。本研究的目的是评估使用寡营养培养基的BCC,与使用TSATSB在不同的无菌蒸馏水样品中保存温度以及不同的防腐剂浓度下的恢复情况,并进行比较。因此推荐这篇文章给大家,希望能对大家有所帮助。

Oligotrophic Media Compared with a Tryptic Soy Agar or Broth for the Recovery of Burkholderia cepacia Complex from Different Storage Temperatures and Culture Conditions

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内容

摘要洋葱伯克霍尔德氏菌菌群(BCC)能够在低营养环境和恶劣条件下保持存活,对非无菌药品构成污染风险,并对检测构成挑战。为了建立检测BCC的最佳回收方法,我们对三种寡营养培养基进行了评价,并营养培养基从高压蒸馏水或防腐溶液中回收BCC进行了比较。20BCC菌株连续稀释后(10-1~10-12 CFU/ml)接种到高压蒸馏水中,在6℃23℃42℃条件下保存42天。用6种洋葱伯克霍尔德氏菌悬液接种含5 μg/ml50 μg/ml氯己定葡萄糖酸酯(CHX)和10 μg/ml苯扎氯铵(BZK)的水溶液,并在23℃储存199天。营养培养基,如胰蛋白酶大豆琼脂(TSA)或胰蛋白酶大豆肉汤(TSB),少营养培养基(1/10强度的TSATSBR2AR2AB,和1/3强度R2AR2AB,使用这些培养基接种从高压蒸馏水和防腐样品的BCC。液体培养基中BCC(水中或防腐剂中)的回收率高于固体培养基。寡营养培养基对20BCC样品的回收效率高于TSATSB。多重比较的结果使我们能够直接识别TSATSB与寡营养培养基之间的显著差异。美国药典(USP)提出的BCC检测的简单检测方法提供了一种寡营养培养基预富集复苏步骤。

材料和方法:

寡培养基的制备:

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结果:

不同储存温度下TSBR2AB的生长动力学:为了了解温度对存活的影响,将20BCC3种温度(6℃2342℃)下保存42天,并在不同的培养基中恢复。综合结果,在6℃23℃42℃下观察到存活,没有发现物种特异性的趋势。当培养基接种初始浓度为102-100 CFU/ml(在蒸馏水6℃23℃保存42天),108-106 CFU/ml(在蒸馏水42°C保存42天时),观察到洋葱AU19236的生长。在TSB1/10×TSBR2AB1/3×R2AB中观察了AU1923630℃培养24 h后的生长,并使用Baranyi模型描述了动力学。接种TSB1/10×TSBR2AB1/3×R2ABAU19236拟合的生长曲线平均r2值为> 0.98。由于回归线与观测数据点近似,因此在平均生长曲线中得到了较高的r2值。在6℃保存的蒸馏水中培养,显示出更长的滞后时间(λ),范围在17.6-27.4h之间(图1A)。在23℃42℃(分别为10.114.2h)下估计的滞后时间没有显著差异(1B1C)。在6℃23℃时,1/10×TSBR2AB1/3×R2AB的滞后时间值(λ)大于TSB,但在42℃时,滞后时间值不大。此外,无论使用何种培养基生长速度(μ)没有显著差异(p > 0.05),尽管寡营养的生长培养基(如1/10×TSB,R2AB1/3×R2AB23℃42℃)增长率更大。

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不同储存温度下TSA与寡营养固体培养基比较:为了评估固体培养基中的活菌落计数,使用ProtoCOL3自动平板计数器对每个平板进行计数。

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经过42天的培养,在6°C104-108 CFU/ml)和23°C107-1012 CFU/ml)的浓度下,所有的琼脂都很容易恢复。然而,在42°C102-106 CFU/ml)的蒸馏水中当20BCC菌株被接种在固体培养基上时,只有8BCC菌株42天后生长。其余菌株培养9天后没有在固体培养基上生长。

6°C储存42天后,所有琼脂的回收率约为104 -108 CFU/mlB. lata HI4002B. cenocepacia HI2976 B. cenocepacia HI2485 BCC菌株,菌落计数较高,达到108 CFU/ml1/3×R2A1.79 ± 6.81×108 CFU/ml)和R2A1.95 ± 7.31×108 CFU/ml)的菌落计数略高于TSA1.67 ± 6.41×108 CFU/ml)的菌落计数。采用Mann-Whitney Rank Sum Test比较TSA1/10×TSA1/3×R2AR2A之间的差异,差异无统计学意义(p < 0.05)。在23°C的蒸馏水中,在各种培养基上,1012 CFU/ml BCC的初始浓度保持不变。1/10×TSA4.18 ± 6.17×1012 CFU/ml)、1/13×R2A4.17 ± 5.62×1012 CFU/ml)和R2A4.46 ± 5.78×1012 CFU/ml)的菌落计数均高于TSA3.44 ± 5.09×1012 CFU/ml)。采用Mann-Whitney Rank Sum Test比较TSAR2A的差异,发现差异有统计学意义(p < 0.041)。

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42°C时,只有8株菌株生长到约105 CFU/ml1/10×TSA2.01 ± 4.17×105 CFU/ml)、1/3×R2A6.56 ± 15.05×105 CFU/ml)和R2A6.53 ± 14.72×105 CFU/ml)的菌落数量比TSA0.57±1.39±1.39×105 CFU/ml)更高。采用Mann-Whitney Rank Sum Test比较TSA与寡营养培养基的差异,如1/10×TSAp = 0.008)、1/3×R2Ap < 0.001)和R2Ap < 0.001)。

不同储存温度下TSB和寡营养肉汤培养基的比较TSB1/10×TSB1/3×R2ABR2AB肉汤培养基在6°C23°C42°C下恢复BCC的能力进行了评估。

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     在6°C存储时,与1/10×TSB1/3×R2ABR2AB相比,TSB介质中的回收效率较低,回收分别为351/480(回收次数/测试次数)、345/480353/480。对接种的菌落数最低(10-12)的4个肉汤的评价表明,1/10×TSB1/3×R2ABR2AB支持从23°C存储中回收BCC。在480次试验中,分别有39949410779TSB1/10×TSB1/3×R2ABR2AB培养基中BCC的回收率存在差异。统计分析显示,TSB的有效性低于1/10×TSB

CHXBZK的恢复

TSA和稀释固体培养基在不同浓度的防腐剂下的比较6株菌株悬浮在550 μg/ml CHX10 μg/ml BZK中。在550 μg/mlCHX溶液中,1/10×TSA7.06 ± 6.5×104 CFU/ml3.73 ± 3.93×103 CFU/ml)的菌落计数略高于TSA6.59 ± 5.12×104 CFU/ml3.03 ± 3.42×103 CFU/ml),分别如下图:

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    采用Mann-Whitney Rank Sum Test比较TSA1/10×TSA的差异,两组间差异无统计学意义(p < 0.05)。此外,在10 μg/mlBZK溶液中,1/10×TSA1.51 ± 1.77×103 CFU/ml)、1/3×R2A1.58 ± 1.73×103 CFU/ml)、R2A129±2.24×103 CFU/ml)的菌株数量分别略高于TSA1.27 ± 1.28×103 CFU/ml)。

不同浓度防腐剂下TSB和少营养肉汤培养基的比较TSB1/10×TSB1/3×R2ABR2AB肉汤培养基在550 μg/ml CHX10 μg/ml BZK中恢复BCC的能力进行评价。在R2AB介质中恢复效率更高,恢复数量分别为134/144(恢复次数/试验次数,从5 μg/ml of CHX)、114/14450 μg/ml of CHX)和113/14410 μg/ml of BZK)。

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    数据统计分析显示,TSBR2ABCHX5μg/mlχ2统计= 6.9231p = 0.0085)、50 μg/mlCHXχ2统计= 9.8223p = 0.0017)和10 μg/mlBZKχ2统计= 31.3481p < 0.05)之间存在显著差异。

 

讨论:

洋葱伯克霍尔德氏菌复合体(BCC)能够在低营养环境和恶劣条件下保持存活,对非无菌药品构成污染风险,并对检测构成挑战。为了建立检测BCC的最佳回收方法,作者对三种寡营养培养基进行了评价,并与营养培养基从高压蒸馏水或防腐溶液中回收BCC进行了比较。将20BCC菌株连续稀释后(10-1~10-12 CFU/ml)接种到高压蒸馏水中,在6℃23℃42℃条件下保存42天。用6种洋葱伯克霍尔德氏菌悬液接种含5 μg/ml50 μg/ml氯己定葡萄糖酸酯(CHX)和10 μg/ml苯扎氯铵(BZK)的水溶液,并在23℃再储存199天。营养培养基,如胰蛋白酶大豆琼脂(TSA)或胰蛋白酶大豆肉汤(TSB),少营养培养基(1/10强度的TSATSBR2AR2AB,和1/3强度R2AR2AB)通过接种高压蒸馏水和防腐样品的BCC到培养基中。肉汤培养基中水中或防腐剂中BCC的回收率高于固体培养基。寡营养培养基对20BCC样品的回收效率高于TSATSB。多重比较的结果使我们能够直接识别TSATSB与寡营养培养基之间的显著差异。